Genetic transformation of commercial cultivars of oat ( Avena sativa L.) and barley ( Hordeum vulgare L.) using in vitro shoot meristematic cultures derived from germinated seedlings

1999 ◽  
Vol 18 (12) ◽  
pp. 959-966 ◽  
Author(s):  
S. Zhang ◽  
M.-J. Cho ◽  
T. Koprek ◽  
R. Yun ◽  
P. Bregitzer ◽  
...  
Euphytica ◽  
1993 ◽  
Vol 67 (1-2) ◽  
pp. 151-154 ◽  
Author(s):  
A. M. R. Baillie ◽  
B. G. Rossnagel ◽  
K. K. Kartha

1990 ◽  
Vol 129 (4) ◽  
pp. 291-302 ◽  
Author(s):  
R. Hunold ◽  
R. Krämer ◽  
R. Kunert ◽  
H. Peterka

Author(s):  
ANDERSON LUIZ NUNES ◽  
RIBAS ANTONIO VIDAL

A determinação da concentração de compostos no solo por meio de plantas quantificadoras apresenta como principal vantagem detectar somente resíduos biologicamente ativos, não havendo necessidade de instrumentos onerosos e de prévia extração dos resíduos do solo. Dessa forma, este trabalho teve como objetivo selecionar plantas quantificadoras da presença de herbicidas residuais (pré emergentes) para o uso em bioensaios. Utilizou-se delineamento experimental completamente casualizado com arranjo bifatorial 8 x 6, com cinco repetições. O fator A consistiu de espécies cultiváveis e o fator B de herbicidas aplicados em pré emergência. Os resultados evidenciaram que a sensibilidade na detecção do herbicida no solo depende da espécie utilizada. A sensibilidade das espécies Lactuca sativa L. e Raphanus sativus var. sativus L. não permitiu condições de quantificar a presença dos herbicidas atrazina, cloransulam, imazaquin, metribuzin e S-metolacloro. Raphanus sativus var. oleiferus Metzger é potencial quantificador de imazaquin e S metolacloro. Plantas de Curcubita pepo L. são promissoras na bioavaliação de metribuzin. A espécie Cucumis sativus L. mostrou-se potencial bioindicadora de cloransulan e imazaquin. Avena sativa L. apresentou-se como potencial quantificadora de imazaquin e metribuzin. Hordeum vulgare L. pode quantificar o metribuzin e Triticum aestivum L. é promissor na detecção da biodisponibilidade de atrazina.


2006 ◽  
Vol 86 (1) ◽  
pp. 63-69
Author(s):  
Seedhabadee Ganeshan ◽  
Brian J Weir ◽  
Monica Båga ◽  
Brian G Rossnagel ◽  
Ravindra N Chibbar

A simple two-step model for evaluation of in vitro regeneration protocols is proposed based on callus induction and regeneration from immature scutella of two Canadian barley (Hordeum vulgare L.) genotypes, AC Metcalfe and SB92559 using the Enhanced Regeneration System (ERS). The number of explants producing embryogenic callus, the number of plants per embryogenic callus and the number of plants per explant were considered. Tissue culture parameters included three combinations of growth regulators, two carbon sources in culture media, and three cold treatment regimes of spikes prior to scutella isolation. Culture medium containing 5 µM 2,4-dichlorophenoxy acetic acid (2,4-D) and 0.5 µM benzyl adenine (BA) induced the highest percent of embryogenic calli and the highest number of shoots per embryogenic callus from AC Metcalfe. Medium containing 3.75 µM 2,4-D and 0.75 µM BA gave the best response for SB92559. Both genotypes produced more shoots on maltose than on sucrose medium. A 2-d treatment of spikes at 4°C resulted in best response for SB92559. Regeneration response from AC Metcalfe scutella from spikes was unaffected by being subjected to 2, 4 or 6 d of cold. Conditions resulting in best responses from both genotypes were tested on four commercial barley varieties. However, these lines showed inferior regeneration compared to SB92559 and AC Metcalfe. Key words: Hordeum vulgare, scutella, embryogenic callus, shoot production


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