Morfologia do escroto, do testículo e das vias espermáticas de Metachirus nudicaudatus (Geoffroy, 1803), Didelphidae-Marsupialia

Resumo: Foram utilizadas as gônadas e vias espermáticas de cinco animais machos, adultos em fase reprodutiva, da espécie Metachirus nudicaudatus Geoffroy 1803, única espécie do gênero, para descrever a morfologia do escroto, do testículo e das vias espermáticas. O Metachirus possui escroto pré-peniano e que contém os testículos permanentemente. A pele escrotal é não pigmentada e com poucos pelos e glândulas. A lâmina parietal da túnica vaginal apresenta-se pouco pigmentada. Os testículos são ovais e ligados ao epidídimo através do pedículo testículo-epididimário. Eles são envolvidos, externamente, pela cápsula testicular e sustentados por um estroma de natureza conjuntiva. As células intersticiais são os elementos predominantes no abundante tecido intertubular. Os túbulos seminíferos são largos, enovelados e envolvidos por uma túnica própria fibroelástica, contendo células mióides. O epitélio seminífero é formado pelas células espermatogênicas e de Sertoli intercaladas. Os túbulos seminíferos convergem em direção à extremidade capitata do testículo, ficando revestidos por apenas células de sustentação, caracterizando uma região de transição entre túbulos seminíferos e túbulos retos, ocupada por uma estrutura tipo "válvula" que obstrui parcialmente o lume tubular. Os túbulos retos reúnem-se para formar um único dúctulo eferente, que percorre uma pequena extensão intratesticular, atravessa a albugínea e penetra no pedículo testículo-epididimário. A parte flexuosa do dúctulo eferente forma um lóbulo separado na parte medial do corpo do epidídimo. O epidídimo é envolvido pela cápsula epididimária e constituído pelo ducto epididimário, que se encontra bastante enovelado. O ducto epididimário é revestido por epitélio simples colunar pseudoestratificado apresentando células principais, basais, apicais e de "halo claro". As células principais são predominantes e apresentam características morfológicas e histoquímicas que diferem ao longo do ducto, possibilitando a caracterização de nove diferentes zonas epididimárias. É no lume da zona sete (início da cauda) que começa o pareamento de espermatozoides. Esse fenômeno coincide com alterações morfológicas bem evidentes e uma maior quantidade de mucossubstâncias neutras é secretada nessa zona.O ducto deferente apresenta-se dividido em três partes: justa-epididimária, funicular e abdominal, baseando nas variações histológicas e histoquímicas de seu epitélio e componentes envolventes. O ducto deferente não apresenta ampola e nem cruza o ureter antes de desembocar na uretra. O funículo espermático contém o ducto deferente, artéria e veias testiculares, vasos linfáticos, nervos e um desenvolvido músculo cremáster. Seus componentes apresentam modificações estruturais nas regiões proximal, média e distal, sendo notável a peculiar rede admirável.

Breast cancer resistance protein regulates apical ectoplasmic specialization dynamics stage specifically in the rat testis

Drug transporters determine the bioavailability of drugs in the testis behind the blood-testis barrier (BTB). Thus, they are crucial for male contraceptive development if these drugs (e.g., adjudin) exert their effects behind the BTB. Herein breast cancer resistance protein (Bcrp), an efflux drug transporter, was found to be expressed by both Sertoli and germ cells. Interestingly, Bcrp was not a component of the Sertoli cell BTB. Instead, it was highly expressed by peritubular myoid cells at the tunica propria and also endothelial cells of the microvessels in the interstitium at all stages of the epithelial cycle. Unexpectedly, Bcrp was found to be expressed at the Sertoli-step 18–19 spermatid interface but limited to stage VI-early VIII tubules, and an integrated component of the apical ectoplasmic specialization (apical ES). Apparently, Bcrp is being used by late-stage spermatids to safeguard their completion of spermiogenesis by preventing harmful drugs to enter these cells while they transform to spermatozoa. Also, the association of Bcrp with actin, Eps8 (epidermal growth factor receptor pathway substrate 8, an actin barbed end capping and bundling protein), and Arp3 (actin-related protein 3, a component of the Arp2/3 complex known to induce branched actin polymerization) at the apical ES suggest that Bcrp may be involved in regulating the organization of actin filament bundles at the site. Indeed, a knockdown of Bcrp by RNAi in the testis perturbed the apical ES function, disrupting spermatid polarity and adhesion. In summary, Bcrp is a regulator of the F-actin-rich apical ES in the testis.

Parâmetros morfofisiológicos testiculares de camundongos (Mus musculus) suplementados com geleia real

Avaliaram-se os efeitos da geleia real sobre os parâmetros morfofisiológicos testiculares de camundongos (Mus musculus). Utilizaram-se 57 machos Swiss, com quatro meses de idade, distribuídos aleatoriamente em seis tratamentos: T1: solução fisiológica, via intraperitoneal; T2: 0,1mg de geleia real, via intraperitoneal; T3: 0,2mg de geleia real, via intraperitoneal; T4: água destilada, via oral; T5: 0,1mg de geleia real, via oral; e T6: 0,2mg de geleia real, via oral. Após 45 dias de suplementação com geleia real, os animais sacrificados e pesados tiveram seus testículos coletados, incluídos em parafina e corados com hematoxilina/eosina. Não houve diferença entre os tratamentos quanto aos: pesos corporal e testicular, índice gonadossomático, diâmetro tubular, altura do epitélio, comprimento total dos túbulos seminíferos, comprimento tubular por grama de testículo, índices tubulossomático e leydigossomático e valores de proporção volumétrica referentes à túnica própria, epitélio seminífero, vaso sanguíneo e vaso linfático. Foi encontrada diferença entre T1 e T3 em relação aos túbulos seminíferos e ao espaço intertubular.

The Ontogeny of Chicken Bursal Stromal Cells Defined by Monoclonal Antibodies

Molecules expressed on lymphoid stromal cells influence the differentiation of lymphocytes. We have examined the expression of stromal markers, identified by monoclonal antibodies, in the chicken bursa of Fabricius during ontogenic development. These results are also consistent with the hypothesis that medullary secretory cells are of mesenchymal origin, whereas the basement membrane-associated and some medullary epithelium are derived from the endoderm. Our results have demonstrated the complexity of bursal stromal development with determinants expressed on the adult medullary stellate cells (e.g., MUI-57 and 62) and cortical macrophages (e.g., MUI-66 and 72) detected on the early em.bryonic tunica propria (e.g., MUI-57, 66 and 72) or surface epithelium (e.g., MUI-62 and 66). In addition, we provide preliminary evidence regarding potential functions of these molecules in stem cell colonization (MUI-52), early B-cell differentiation (e.g., MUI-72), late bursal B-cell development (MUI-69 and 71) and the follicle-associated epithelium transport mechanism (MUI-61 and 73).

Pathology of Coelomomyces stegomyiae in adult Aedes aegypti ovaries

Coelomomyces stegomyiae (Chytridiomycetes, Blastocladiales) infection in adult female Aedes aegypti (Diptera, Culicidae) is located primarily in the ovaries. Fungal hyphae do not penetrate the germaria or follicles but instead lie between the tunica propria and epithelial sheath within each ovariole and between the epithelial sheath and the peritoneal sheath of the ovary. Aedes aegypti is an anautogenous mosquito requiring a blood meal for egg development; similarly, fungal hyphae in infected ovaries will not differentiate to form resting sporangia until after the mosquito has taken a blood meal. The fungus restricts receptor-mediated endocytosis of vitellogenin by the plasma membrane of the oocyte so that few, if any, vitellin yolk granules form. Thick-walled resting sporangia have formed 72 h after the blood meal has been taken and these will be oviposited by the females in place of the aborted eggs.

Differentiation markers in the Drosophila ovary

A library of monoclonal antibodies, raised against imaginal discs of Drosophila melanogaster, was screened for binding to differentiation antigens in the adult ovary by immunofluorescence. Several lectins were similarly assayed. Two antibodies, DOV 1 and DOV 2, and wheat germ agglutinin exhibited binding which was restricted to particular stages of ovarian cell differentiation. DOV 2 also showed a marked preferential binding to the cell surface of germ line cells in the ovary. A differentiation of the portion of the tunica propria covering the anterior part of the germarium was revealed by the monoclonal antibody DOV 3. Another monoclonal antibody, DOV 4, identified a molecular specialization of the chorion at the tip of the micropyle. These markers should provide tools for the molecular analysis of oogenesis.