Comparative analysis of Circulating Tumour Cells detection and circulating tumor DNA in liquid biopsy for the diagnosis of early stage pancreatic adenocarcinoma

2019 ◽  
Vol 45 (2) ◽  
pp. e70
Author(s):  
E. Buscail ◽  
C. Charline ◽  
C. Alix-Panabières ◽  
P. Quincy ◽  
O. Degrandi ◽  
...  
Pancreatology ◽  
2018 ◽  
Vol 18 (4) ◽  
pp. S9
Author(s):  
Etienne Buscail ◽  
Charline Caumont ◽  
Catherine Alix-Panabières ◽  
Pascaline Quincy ◽  
Marion Marty ◽  
...  

Pancreatology ◽  
2017 ◽  
Vol 17 (3) ◽  
pp. S23
Author(s):  
Etienne Buscail ◽  
Olivier Degrandi ◽  
Charline Caumont ◽  
Jean-Philippe Merlio ◽  
François Moreau-Gaudry ◽  
...  

2020 ◽  
Author(s):  
Daniel Morgensztern ◽  
Emma Green ◽  
Jennifer C. King ◽  
Alicia Sable-Hunt ◽  
Richard Erwin ◽  
...  

2019 ◽  
Author(s):  
Μάρθα Ζαβρίδου

Η «υγρή βιοψία», βασισμένη στην ανάλυση των κυκλοφορούντων καρκινικών κυττάρων (circulating tumor cells, CTCs), του εξωκυττάριου καρκινικού DNA (circulating tumor DNA, ctDNA), των miRNAs και των εξωσωμάτων παρέχει μια μη-επεμβατική παρακολούθηση της εξέλιξης της νόσου και της αποτελεσματικότητας της θεραπείας, σε πραγματικό χρόνο.Στην παρούσα διδακτορική διατριβή, αρχικά αξιολογήσαμε την επίδραση των προαναλυτικών συνθηκών για την ανάλυση γονιδιακής έκφρασης στα CTCs. Για το σκοπό αυτό πραγματοποιήθηκαν πειράματα εμβολιασμού 100 MCF7 σε σωληνάρια συλλογής περιφερικού αίματος, με διαφορετική σύσταση αντιπηκτικού και συντηρητικών των κυττάρων. Στη συνέχεια ακολούθησε η απομόνωση των CTCs με EpCAM-θετικό ανοσομαγνητικό εμπλουτισμό σε διαστήματα 0h, 24h και 48h και ποσοτικός προσδιορισμός της έκφρασης των γονιδίων B2M και CK-19 στα CTCs με RT-qPCR. Παράλληλα, προτείνουμε μια ολοκληρωμένη διαδικασία ελέγχου ποιότητας όλων των βημάτων που συμπεριλαμβάνονται στην πειραματική πορεία για αναλύσεις γονιδιακής έκφρασης σε δείγματα υγρής βιοψίας. Τα αποτελέσματά μας δείχνουν ότι οι αναλύσεις των CTCs σε επίπεδο mRNA επηρεάζονται από τα συντηρητικά ή/και τα αντιπηκτικά που χρησιμοποιούνται στα περισσότερα σωληνάρια συλλογής περιφερικού αίματος.Στη συνέχεια, στόχο μας αποτέλεσε η επιλογή του βέλτιστου συστήματος απομόνωσης/εμπλουτισμού CTCs για το μοριακό χαρακτηρισμό τους στον HNSCC. Για αυτό το λόγο, πραγματοποιήθηκε για πρώτη φορά άμεση σύγκριση του συστήματος Parsortix, που βασίζεται σε σύστημα μικροροών για την απομόνωση/εμπλουτισμό των CTCs με βάση το μέγεθός τους, με τον ανοσομαγνητικό εμπλουτισμό των CTCs με βάση το EpCAM από το ίδιο περιφερικό αίμα ασθενών με HNSCC και προχωρήσαμε στη συνέχεια σε μοριακό χαρακτηρισμό των CTCs σε επίπεδο γονιδιακής έκφρασης. Τα αποτελέσματα της παρούσας μελέτης υποδεικνύουν σαφώς ότι ο πληθυσμός των CTCs που απομονώθηκε με το σύστημα Parsortix είναι υψηλότερης καθαρότητας σε σχέση με τον πληθυσμό των CTCs που απομονώθηκε με EpCAM θετικό ανοσομαγνητικό εμπλουτισμό. Επιπρόσθετα, αναπτύξαμε μεθοδολογία πολλαπλής RT-qPCR για τον ταυτόχρονο ποσοτικό προσδιορισμό της έκφρασης του υποδοχέα των ανδρογόνων (AR), AR-full length (AR-FL), των εναλλακτικών μεταγράφων του AR-V7 και AR-567 και του ολικού AR-total με ανιχνευτές υδρόλυσης στο όργανο Cobas z480 (Roche Diagnostics). Η αναπτυχθείσα μεθοδολογία εφαρμόστηκε και αξιολογήθηκε κλινικά στα CTCs και στα εξωσώματα που απομονώθηκαν από το πλάσμα ασθενών με μεταστατικό ευνουχοάντοχο καρκίνο προστάτη. Τα αποτελέσματά μας υποδεικνύουν ξεκάθαρα ότι η μέθοδος μπορεί να εφαρμοστεί τόσο στα CTCs όσο και στα εξωσώματα.Στο τελευταίο μέρος της διατριβής, διερευνήθηκε το μοριακό προφίλ των CTCs και των εξωσωμάτων ασθενών με ευνουχοάντοχο καρκίνο προστάτη. Πιο συγκεκριμένα, μελετήθηκε το προφίλ της έκφρασης των γονιδίων PD-L1, CK-19, των εναλλακτικών μεταγράφων AR-FL, AR-V7, AR-567 και AR-total, καθώς και το προφίλ μεθυλίωσης των γονιδίων GSTP1 και RASSF1A. Η διδακτορική διατριβή χρηματοδοτήθηκε από το Ευρωπαϊκό Πρόγραμμα IMI-CANCER-ID (αρ. συμβολαίου 115749): “Cancer treatment and monitoring through identification of circulating tumour cells and tumour related nucleic acids in blood” (https://www.cancer-id.eu/)


2016 ◽  
Vol 62 (11) ◽  
pp. 1482-1491 ◽  
Author(s):  
Nora Brychta ◽  
Thomas Krahn ◽  
Oliver von Ahsen

Abstract BACKGROUND Since surgical removal remains the only cure for pancreatic cancer, early detection is of utmost importance. Circulating biomarkers have potential as diagnostic tool for pancreatic cancer, which typically causes clinical symptoms only in advanced stage. Because of their high prevalence in pancreatic cancer, KRAS proto-oncogene, GTPase [KRAS (previous name: Kirsten rat sarcoma viral oncogene homolog)] mutations may be used to identify tumor-derived circulating plasma DNA. Here we tested the diagnostic sensitivity of chip based digital PCR for the detection of KRAS mutations in circulating tumor DNA (ctDNA) in early stage pancreatic cancer. METHODS We analyzed matched plasma (2 mL) and tumor samples from 50 patients with pancreatic cancer. Early stages (I and II) were predominant (41/50) in this cohort. DNA was extracted from tumor and plasma samples and tested for the common codon 12 mutations G12D, G12V, and G12C by chip-based digital PCR. RESULTS We identified KRAS mutations in 72% of the tumors. 44% of the tumors were positive for G12D, 20% for G12V, and 10% for G12C. One tumor was positive for G12D and G12V. Analysis of the mutations in matched plasma samples revealed detection rates of 36% for G12D, 50% for G12V, and 0% for G12C. The detection appeared to be correlated with total number of tumor cells in the primary tumor. No KRAS mutations were detected in 20 samples of healthy control plasma. CONCLUSIONS Our results support further evaluation of tumor specific mutations as early diagnostic biomarkers using plasma samples as liquid biopsy.


Sign in / Sign up

Export Citation Format

Share Document