Relationships between cisplatin-induced adducts and DNA strand-breaks, mutation and recombination in vivo in somatic cells of Drosophila melanogaster, under different conditions of nucleotide excision repair

Author(s):  
Daniel García Sar ◽  
Leticia Aguado ◽  
María Montes Bayón ◽  
Miguel A. Comendador ◽  
Elisa Blanco González ◽  
...  
Cell Reports ◽  
2015 ◽  
Vol 13 (1) ◽  
pp. 70-79 ◽  
Author(s):  
Mara L. Hartung ◽  
Dorothea C. Gruber ◽  
Katrin N. Koch ◽  
Livia Grüter ◽  
Hubert Rehrauer ◽  
...  

2007 ◽  
Vol 25 (18_suppl) ◽  
pp. 13005-13005 ◽  
Author(s):  
L. Liu ◽  
A. Bulgar ◽  
J. Donze ◽  
B. J. Adams ◽  
C. P. Theuer ◽  
...  

13005 Background: TRC102 (methoxyamine) reverses resistance to alkylating agents by inhibiting base excision repair (BER; a mechanism of DNA repair), thereby increasing DNA strand breaks and potentiating the anti-tumor activity of alkylating agents without additional toxicity, Based on these data, TRC102 is currently being studied in combination with temozolomide in a phase 1 trial. We hypothesized that inhibition of BER by TRC102 would also increase DNA strand breaks and improve the anti-tumor activity of anti-metabolite chemotherapeutics, including pemetrexed, because these agents also produce AP sites that are recognized and repaired by BER. Methods: Pemetrexed- induced AP sites and BER inhibition was quantified using an apurinic/apyrimidinic (AP) site assay in vitro. Single and double DNA strand breaks were quantified by the Comet assay in vitro and anti-tumor activity was assessed in an in vivo xenograft study of subcutaneously implanted H460 human lung cancer cells. Results: Pemetrexed induced and TRC102 reduced the number of available AP sites in pemetrexed- treated H460 cells (by 60–80%), indicating successful inhibition of BER. TRC102 treatment increased DNA strand breaks in pemetrexed-treated H460 cells (2 fold increase versus treatment with pemetrexed alone). Premetrexed treatment alone and in combination with TRC 102 delayed tumor growth in vivo (tumor growth delay of 4.7 days in the 150 mg/m2 pemetrexed alone group, 5.7 days in the 150 mg/m2 pemetrexed + 2 mg/m2 TRC102 group and 6.9 days in the 150 mg/m2 pemetrexed + 4 mg/m2 TRC102 group); in vivo systemic toxicity was not increased. TRC102 alone had no effect in vitro or in vivo. Conclusions: TRC102 effectively inhibits BER in lung cancer cells treated with pemetrexed. Inhibition of DNA repair by TRC102 results in an increase in DNA strand breaks and improved anti-tumor activity versus treatment with pemetrexed alone. Given its preclinical efficacy and safety profile, study of TRC102 combined with pemetrexed in a phase 1 trial is warranted. No significant financial relationships to disclose.


2006 ◽  
Vol 26 (5) ◽  
pp. 1839-1849 ◽  
Author(s):  
Arman Nabatiyan ◽  
Dávid Szüts ◽  
Torsten Krude

ABSTRACT Genome stability in eukaryotic cells is maintained through efficient DNA damage repair pathways, which have to access and utilize chromatin as their natural template. Here we investigate the role of chromatin assembly factor 1 (CAF-1) and its interacting protein, PCNA, in the response of quiescent human cells to DNA double-strand breaks (DSBs). The expression of CAF-1 and PCNA is dramatically induced in quiescent cells upon the generation of DSBs by the radiomimetic drug bleocin (a bleomycin compound) or by ionizing radiation. This induction depends on DNA-PK. CAF-1 and PCNA are recruited to damaged chromatin undergoing DNA repair of single- and double-strand DNA breaks by the base excision repair and nonhomologous end-joining pathways, respectively, in the absence of extensive DNA synthesis. CAF-1 prepared from repair-proficient quiescent cells after induction by bleocin mediates nucleosome assembly in vitro. Depletion of CAF-1 by RNA interference in bleocin-treated quiescent cells in vivo results in a significant loss of cell viability and an accumulation of DSBs. These results support a novel and essential role for CAF-1 in the response of quiescent human cells to DSBs, possibly by reassembling chromatin following repair of DNA strand breaks.


2021 ◽  
Vol 4 (10) ◽  
pp. e202101159
Author(s):  
Alexandra K Ciminera ◽  
Sarah C Shuck ◽  
John Termini

We investigated potential mechanisms by which elevated glucose may promote genomic instability. Gene expression studies, protein measurements, mass spectroscopic analyses, and functional assays revealed that elevated glucose inhibited the nucleotide excision repair (NER) pathway, promoted DNA strand breaks, and increased levels of the DNA glycation adduct N2-(1-carboxyethyl)-2ʹ-deoxyguanosine (CEdG). Glycation stress in NER-competent cells yielded single-strand breaks accompanied by ATR activation, γH2AX induction, and enhanced non-homologous end-joining and homology-directed repair. In NER-deficient cells, glycation stress activated ATM/ATR/H2AX, consistent with double-strand break formation. Elevated glucose inhibited DNA repair by attenuating hypoxia-inducible factor-1α–mediated transcription of NER genes via enhanced 2-ketoglutarate–dependent prolyl hydroxylase (PHD) activity. PHD inhibition enhanced transcription of NER genes and facilitated CEdG repair. These results are consistent with a role for hyperglycemia in promoting genomic instability as a potential mechanism for increasing cancer risk in metabolic disease. Because of the pleiotropic functions of many NER genes beyond DNA repair, these results may have broader implications for cellular pathophysiology.


2019 ◽  
Author(s):  
Κυριάκος Αγαθαγγέλου

Σε αντίθεση με τις πρωτεΐνες και τα υπόλοιπα μακρομόρια π.χ. τα σάκχαρα ή τα λίπη, το πυρηνικό DNA (η απαρχή του RNA και των πρωτεϊνών) είναι αναντικατάστατο. Παρά το γεγονός ότι η χημική του σύσταση είναι εξαιρετικά ασταθής, το DNA οφείλει να διατηρηθεί αναλλοίωτο καθόλη τη διάρκεια της ζωής του κυττάρου ώστε η γενετική πληροφορία να κληρονομηθεί αυτούσια στα θυγατρικά κύτταρα. Ωστόσο, η ύπαρξη διαφόρων ενδογενών γενοτοξικών παραγόντων προκαλούν τη σταδιακή συσσώρευση πλήθους δομικών αλλοιώσεων και προσβολών (π.χ. υδρόλυση, απαμίνωση βάσεων, διμερισμός πυριμιδινών, δημιουργία θραυσμάτων μονής ή διπλής DNA έλικας κτλ.) στο DNA. Η επακόλουθη γενωμική αστάθεια επιφέρει δραματικές αλλαγές στη φυσιολογία του κυττάρου παρεμποδίζοντας τη φυσιολογική λειτουργία ζωτικών βιολογικών διεργασιών όπως η μεταγραφή ή/και ο αναδιπλασιασμός του DNA. Για να αντιμετωπίσουν την σταδιακή συσσώρευση DNA βλαβών, τα ευκαρυωτικά κύτταρα έχουν αναπτύξει ένα σύνολο αλληλεπικαλυπτόμενων επιδιορθωτικών μηχανισμών, συμπεριλαμβανομένου του μηχανισμού εκτομής νουκλεοτιδίων (Nucleotide Excision Repair, NER), που εντοπίζουν, επιδιορθώνουν και αποκαθιστούν το προσβαλλόμενο DNA στην αρχική του μορφή. Στον άνθρωπο και τα αντίστοιχα πειραματικά μοντέλα ποντικών, η ύπαρξη εγγενών μεταλλαγών σε γονίδια του μονοπατιού NER, προκαλεί ένα ευρύ φάσμα κλινικών συμπτωμάτων που χαρακτηρίζεται από εξαιρετική ετερογένεια, η οποία δε μπορεί να εξηγηθεί αποκλειστικά λόγω της ατελούς επιδιόρθωσης του DNA. Πρόσφατες μελέτες απεκάλυψαν ότι ορισμένες πρωτεΐνες του NER συμμετέχουν, πέραν της επιδιόρθωσης των DNA βλαβών, σε κυτταρικές διεργασίες όπως η έναρξη της μεταγραφής και η αναδιαμόρφωση ή ο σχηματισμός της τρισδιάστατης δομής της χρωματίνης στο χώρο. Για να διαλευκάνουμε το λειτουργικό ρόλο του NER στην ανάπτυξη και τις ασθένειες στα θηλαστικά, αναπτύξαμε την μέθοδο της in vivo σήμανσης με βιοτίνη της πρωτεΐνης XPF στον ποντικό. Η προσέγγιση αυτή σε συνδυασμό με μεθοδολογίες αλληλούχισης DNA υψηλής απόδοσης και λειτουργικές προσεγγίσεις απεκάλυψαν ότι το ετεροδιμερές του συμπλόκου ενδονουκλεάσης του NER ERCCI-XPF αλληλεπιδρά με πρωτεϊνικούς παράγοντες που συμμετέχουν στην μεταγραφή και την εξομάλυνση του τοπολογικού φόρτου του DNA κατά την διαδικασία της μεταγραφής. Συγκεκριμένα, ανιχνεύσαμε ότι κατά την επαγωγή της μεταγραφής, η ERCC1-XPF προσδένεται σε υποκινητές, κατά μήκος του γονιδιώματος. Επιπλέον μελέτες απεκάλυψαν ότι η πρόσδεση του συμπλόκου ERCC1-XPF στο DNA, συμπίπτει με την δημιουργία εκτομών διπλού θραύσματος στο DNA (DNA double strand breaks, DSBs) σε διακριτές περιοχές του DNA. Τα αποτελέσματα της μελέτης αναδεικνύουν τον λειτουργικό ρόλο της ERCC1-XPF στην επιδιόρθωση DNA βλαβών που προκαλούνται κατά την διαδικασία της μεταγραφής και παρέχουν ένα μηχανιστικό μοντέλο που εξηγεί ικανοποιητικά την κλινική ετερογένεια των συνδρόμων NER.


Science ◽  
1971 ◽  
Vol 172 (3985) ◽  
pp. 851-854 ◽  
Author(s):  
C. D. Town ◽  
K. C. Smith ◽  
H. S. Kaplan

Sign in / Sign up

Export Citation Format

Share Document