scholarly journals Engineering and Evolution of Methanol Assimilation in Saccharomyces cerevisiae

2019 ◽  
Author(s):  
Monica I. Espinosa ◽  
Ricardo A. Gonzalez-Garcia ◽  
Kaspar Valgepea ◽  
Manuel Plan ◽  
Colin Scott ◽  
...  

AbstractMicrobial fermentation for chemical production is becoming more broadly adopted as an alternative to petrochemical refining. Fermentation typically relies on sugar as a feedstock, however, one-carbon compounds like methanol are an attractive alternative as they can be derived from organic waste and natural gas. This study focused on engineering methanol assimilation in the yeast Saccharomyces cerevisiae. Three methanol assimilation pathways were engineered and tested: a synthetic xylulose monophosphate (XuMP), a ‘hybrid’ methanol dehydrogenase-XuMP, and a bacterial ribulose monophosphate (RuMP) pathway, with the latter identified as the most effective at assimilating methanol. Additionally, 13C-methanol tracer analysis uncovered a native capacity for methanol assimilation in S. cerevisiae, which was optimized using Adaptive Laboratory Evolution. Three independent lineages selected in liquid methanol-yeast extract medium evolved premature stop codons in YGR067C, which encodes an uncharacterised protein that has a predicted DNA-binding domain with homology to the ADR1 transcriptional regulator. Adr1p regulates genes involved in ethanol metabolism and peroxisomal proliferation, suggesting YGR067C has a related function. When one of the evolved YGR067C mutations was reverse engineered into the parental CEN.PK113-5D strain, there were up to 5-fold increases in 13C-labelling of intracellular metabolites from 13C-labelled methanol when 0.1 % yeast extract was a co-substrate, and a 44 % increase in final biomass. Transcriptomics and proteomics revealed that the reconstructed YGR067C mutation results in down-regulation of genes in the TCA cycle, glyoxylate cycle, and gluconeogenesis, which would normally be up-regulated during growth on a non-fermentable carbon source. Combining the synthetic RuMP and XuMP pathways with the reconstructed Ygr067cp truncation led to further improvements in growth. These results identify a latent methylotrophic metabolism in S. cerevisiae and pave the way for further development of native and synthetic one-carbon assimilation pathways in this model eukaryote.

Yeast ◽  
2010 ◽  
Vol 28 (2) ◽  
pp. 153-166 ◽  
Author(s):  
Yong Joo Lee ◽  
Jin Won Jang ◽  
Kyung Jin Kim ◽  
Pil Jae Maeng

AMB Express ◽  
2019 ◽  
Vol 9 (1) ◽  
Author(s):  
Peerada Promdonkoy ◽  
Wiparat Siripong ◽  
Joe James Downes ◽  
Sutipa Tanapongpipat ◽  
Weerawat Runguphan

Abstract As the importance of reducing carbon emissions as a means to limit the serious effects of global climate change becomes apparent, synthetic biologists and metabolic engineers are looking to develop renewable sources for transportation fuels and petroleum-derived chemicals. In recent years, microbial production of high-energy fuels has emerged as an attractive alternative to the traditional production of transportation fuels. In particular, the Baker’s yeast Saccharomyces cerevisiae, a highly versatile microbial chassis, has been engineered to produce a wide array of biofuels. Nevertheless, a key limitation of S. cerevisiae is its inability to utilize xylose, the second most abundant sugar in lignocellulosic biomass, for both growth and chemical production. Therefore, the development of a robust S. cerevisiae strain that is able to use xylose is of great importance. Here, we engineered S. cerevisiae to efficiently utilize xylose as a carbon source and produce the advanced biofuel isobutanol. Specifically, we screened xylose reductase (XR) and xylose dehydrogenase (XDH) variants from different xylose-metabolizing yeast strains to identify the XR–XDH combination with the highest activity. Overexpression of the selected XR–XDH variants, a xylose-specific sugar transporter, xylulokinase, and isobutanol pathway enzymes in conjunction with the deletions of PHO13 and GRE3 resulted in an engineered strain that is capable of producing isobutanol at a titer of 48.4 ± 2.0 mg/L (yield of 7.0 mg/g d-xylose). This is a 36-fold increase from the previous report by Brat and Boles and, to our knowledge, is the highest isobutanol yield from d-xylose in a microbial system. We hope that our work will set the stage for an economic route for the production of advanced biofuel isobutanol and enable efficient utilization of lignocellulosic biomass.


Genetics ◽  
1996 ◽  
Vol 144 (1) ◽  
pp. 57-69 ◽  
Author(s):  
Mark T McCammon

Abstract The two carbon compounds, ethanol and acetate, can be oxidatively metabolized as well as assimilated into carbohydrate in the yeast Saccharomyces cerevisiae. The distribution of acetate metabolic enzymes among several cellular compartments, mitochondria, peroxisomes, and cytoplasm makes it an intriguing system to study complex metabolic interactions. To investigate the complex process of carbon catabolism and assimilation, mutants unable to grow on acetate were isolated. One hundred five Acn− (“Acetate Nonutilizing”) mutants were sorted into 21 complementation groups with an additional 20 single mutants. Five of the groups have defects in TCA cycle enzymes: MDH1, CIT1, ACO1, IDH1, and IDH2. A defect in RTG2, involved in the retrograde communication between the mitochondrion and the nucleus, was also identified. Four genes encode enzymes of the glyoxylate cycle and gluconeogenesis: ICL1, MLS1, MBH2, and PCK1. Five other genes appear to be defective in regulating metabolic activity since elevated levels of enzymes in several metabolic pathways, including the glyoxylate cycle, gluconeogenesis, and acetyl-coA metabolism, were detected in these mutants: ACN8, ACN9, ACNl7, ACN18, and ACN42. In summary, this analysis has identified at least 22 and as many as 41 different genes involved in acetate metabolism.


2014 ◽  
Vol 80 (10) ◽  
pp. 3044-3052 ◽  
Author(s):  
Alexey Vorobev ◽  
Sheeja Jagadevan ◽  
Sunit Jain ◽  
Karthik Anantharaman ◽  
Gregory J. Dick ◽  
...  

ABSTRACTA minority of methanotrophs are able to utilize multicarbon compounds as growth substrates in addition to methane. The pathways utilized by these microorganisms for assimilation of multicarbon compounds, however, have not been explicitly examined. Here, we report the draft genome of the facultative methanotrophMethylocystissp. strain SB2 and perform a detailed transcriptomic analysis of cultures grown with either methane or ethanol. Evidence for use of the canonical methane oxidation pathway and the serine cycle for carbon assimilation from methane was obtained, as well as for operation of the complete tricarboxylic acid (TCA) cycle and the ethylmalonyl-coenzyme A (EMC) pathway. Experiments withMethylocystissp. strain SB2 grown on methane revealed that genes responsible for the first step of methane oxidation, the conversion of methane to methanol, were expressed at a significantly higher level than those for downstream oxidative transformations, suggesting that this step may be rate limiting for growth of this strain with methane. Further, transcriptomic analyses ofMethylocystissp. strain SB2 grown with ethanol compared to methane revealed that on ethanol (i) expression of the pathway of methane oxidation and the serine cycle was significantly reduced, (ii) expression of the TCA cycle dramatically increased, and (iii) expression of the EMC pathway was similar. Based on these data, it appears thatMethylocystissp. strain SB2 converts ethanol to acetyl-coenzyme A, which is then funneled into the TCA cycle for energy generation or incorporated into biomass via the EMC pathway. This suggests that some methanotrophs have greater metabolic flexibility than previously thought and that operation of multiple pathways in these microorganisms is highly controlled and integrated.


Author(s):  
Thomas Perli ◽  
Dewi P.I. Moonen ◽  
Marcel van den Broek ◽  
Jack T. Pronk ◽  
Jean-Marc Daran

AbstractQuantitative physiological studies on Saccharomyces cerevisiae commonly use synthetic media (SM) that contain a set of water-soluble growth factors that, based on their roles in human nutrition, are referred to as B-vitamins. Previous work demonstrated that, in S. cerevisiae CEN.PK113-7D, requirements for biotin could be eliminated by laboratory evolution. In the present study, this laboratory strain was shown to exhibit suboptimal specific growth rates when either inositol, nicotinic acid, pyridoxine, pantothenic acid, para-aminobenzoic acid (pABA) or thiamine were omitted from SM. Subsequently, this strain was evolved in parallel serial-transfer experiments for fast aerobic growth on glucose in the absence of individual B-vitamins. In all evolution lines, specific growth rates reached at least 90 % of the growth rate observed in SM supplemented with a complete B-vitamin mixture. Fast growth was already observed after a few transfers on SM without myo-inositol, nicotinic acid or pABA. Reaching similar results in SM lacking thiamine, pyridoxine or pantothenate required over 300 generations of selective growth. The genomes of evolved single-colony isolates were re-sequenced and, for each B-vitamin, a subset of non-synonymous mutations associated with fast vitamin-independent growth were selected. These mutations were introduced in a non-evolved reference strain using CRISPR/Cas9-based genome editing. For each B-vitamin, introduction of a small number of mutations sufficed to achieve substantially a increased specific growth rate in non-supplemented SM that represented at least 87% of the specific growth rate observed in fully supplemented complete SM.ImportanceMany strains of Saccharomyces cerevisiae, a popular platform organism in industrial biotechnology, carry the genetic information required for synthesis of biotin, thiamine, pyridoxine, para-aminobenzoic acid, pantothenic acid, nicotinic acid and inositol. However, omission of these B-vitamins typically leads to suboptimal growth. This study demonstrates that, for each individual B-vitamin, it is possible to achieve fast vitamin-independent growth by adaptive laboratory evolution (ALE). Identification of mutations responsible for these fast-growing phenotype by whole-genome sequencing and reverse engineering showed that, for each compound, a small number of mutations sufficed to achieve fast growth in its absence. These results form an important first step towards development of S. cerevisiae strains that exhibit fast growth on cheap, fully mineral media that only require complementation with a carbon source, thereby reducing costs, complexity and contamination risks in industrial yeast fermentation processes.


2013 ◽  
Author(s):  
Θεόδωρος Αγγελόπουλος

Στόχος της διατριβής ήταν η ανάπτυξη μιας ολοκληρωμένης μεθοδολογίας βιοτεχνολογικής αξιοποίησης μικτών στερεών και υγρών αποβλήτων της βιομηχανίας τροφίμων (ζύθου, γάλακτος, ζάχαρης), μαζικής εστίασης ή χωματερών για την παραγωγή προϊόντων προστιθέμενης αξίας. Συγκεκριμένα τα απόβλητα που χρησιμοποιήθηκαν ήταν οι φλοιοί και τα ριζίδια βύνης (BSG και MSR αντίστοιχα), το τυρόγαλα, η μελάσσα και οι πούλπες πορτοκαλιού και πατάτας. Έτσι, μελετήθηκε η χρήση μικτών αποβλήτων της βιομηχανίας τροφίμων για την παραγωγή προϊόντων προστιθέμενης αξίας με βάση την SCP, χρησιμοποιώντας τέσσερεις μικροοργανισμούς, το αλκοολανθεκτικό και κρυοανθεκτικό στέλεχος Saccharomyces cerevisiae AXAZ-1, το θερμόφιλο στέλεχος Kluyveromyces marxianus, τη φυσική μικτή καλλιέργεια κεφίρ και το εδώδιμο μανιτάρι Pleurotus ostreatus. Αναλυτικότερα, αρχικά αναλύθηκε η σύσταση των αγροτοβιομηχανικών αποβλήτων ως προς την υγρασία τους, τα ξηρά συστατικά, την πρωτεΐνη και τα σάκχαρα που αυτά περιέχουν, το λίπος, το C.O.D. καθώς και τα φαινολικά συστατικά αλλά και την αντιοξειδωτική ικανότητα που αυτά διαθέτουν. Επιπλέον, τα 6 απόβλητα αναλύθηκαν ως προς την περιεκτικότητά τους σε μέταλλα και αρωματικά συστατικά. Και τα 6 απόβλητα περιείχαν σημαντική ποσότητα σακχάρου αλλά και πρωτεΐνης. Επίσης, όλα τα απόβλητα είχαν υψηλό C.O.D, κάτι που αποδεικνύει το πόσο σημαντικοί ρύποι είναι τα συγκεκριμένα απόβλητα. Επίσης περιείχαν σημαντική συγκέντρωση φαινολικών συστατικών, ακόμη και το τυρόγαλα για το οποίο ήταν κάτι αξιοσημείωτο. Παρόλα αυτά, η αντιοξειδωτική τους ικανότητα ήταν μηδαμινή. Το περιεχόμενο των αποβλήτων σε μέταλλα ήταν αρκετά υψηλό με κύριο συστατικό το μαγνήσιο. Τέλος, τα 6 απόβλητα ήταν πλούσια σε πτητικά συστατικά όπως αυτά προσδιορίστηκαν με ανάλυση headspace SPME GC/MS. Επίσης, μελετήθηκε η χρήση μικτών αποβλήτων ως υποστρώματα παραγωγής SCP με ζυμώσεις υγρής (SmF) και στερεάς κατάστασης (SSF) χρησιμοποιώντας τους μικροοργανισμούς, S. cerevisiae AXAZ-1, K. marxianus ΙΜΒ3, κεφίρ και P. ostreatus. Το υπόστρωμα που παρείχε την μεγαλύτερη απόδοση βιομάζας (g βιομάζας/ g καταναλωθέντος σακχάρου) S. cerevisiae AXAZ-1 μέσω υγρής ζύμωσης ήταν 100 mL πούλπα πορτοκαλιού, 50 mL μελάσσα 4 οBe και 50 mL νερό ενώ για την ζύμωση στερεάς κατάστασης οι ίδιες ποσότητες με την προσθήκη 70 g BSG. Οι βέλτιστες συνθήκες παραγωγής SCP ήταν θερμοκρασία 30 οC και pH 5,5. Όσον αφορά τον K. marxianus, το βέλτιστο υπόστρωμα παραγωγής SCP ήταν 100 mL πούλπα πορτοκαλιού, 30 mL τυρόγαλα, 10 mL μελάσσα, 10 mL πούλπα πατάτας και 50 mL νερό για υγρή ζύμωση, ενώ για την στερεή το βέλτιστο υπόστρωμα περιείχε και 80 g BSG. Οι βέλτιστες συνθήκες παραγωγής SCP ήταν 30 οC και pH 7. Το υπόστρωμα που παρείχε την μεγαλύτερη απόδοση βιομάζας κεφίρ ήταν 100 mL τυρόγαλα, 30 mL πούλπα πορτοκαλιού, 10 mL μελάσσα, 10 mL πούλπα πατάτας και 50 mL νερό, όσον αφορά την υγρή ζύμωση, ενώ για την στερεή ζύμωση προστέθηκαν 60 g BSG και 25 g MSR. Οι βέλτιστες συνθήκες παραγωγής SCP ήταν θερμοκρασία 30 οC και pH 5,5. Όσον αφορά τον μύκητα P. ostreatus το υπόστρωμα το οποίο παρείχε την μεγαλύτερη κατανάλωση σακχάρου και ταυτόχρονα αύξηση της περιεχόμενης πρωτεΐνης αλλά και μεγαλύτερη απόδοση μυκηλίου ήταν 20 mL μελάσσα, 20 mL πούλπα πατάτας, 5 mL τυρόγαλα, 5 mL πούλπα πορτοκαλιού, 30 g BSG και 5 g MSR. Οι βέλτιστες συνθήκες ανάπτυξης μυκηλίου ήταν θερμοκρασία 30 οC και pH 4. Σε όλες τις περιπτώσεις παραγωγής SCP διαπιστώθηκε πως η πούλπα πορτοκαλιού και τα BSG είχαν την δράση προωθητή της παραγωγής SCP. Ακόμη, μελετήθηκε η παραγωγή εδώδιμών μανιταριών P. ostreatus με χρήση τριών τύπων αντιδραστήρων (σακούλα πολυαιθυλενίου, αλουμινένια οριζόντια δοχεία, κάθετοι πλαστικοί αντιδραστήρες) οι οποίοι συμπληρώθηκαν με 1 Kg αποστειρωμένου μικτού στερεού υποστρώματος και στη συνέχεια αφέθηκαν για επώαση στους 25 οC. Μετά το πέρας 40 ημερών δεν διαπιστώθηκε εμφάνιση καρποφοριών. Ακόμη, οι SCP που παράχθηκαν μέσω ζύμωσης μικτών αποβλήτων αξιολογήθηκαν ως τρόφιμο ή ζωοτροφή, αναλύοντας την ποιότητά τους. Παρουσίασαν υψηλή περιεκτικότητα σε πρωτεΐνη, λίπος και μέταλλα, συστατικά που είναι σημαντικά τόσο για την ανθρώπινη διατροφή όσο και για την διατροφή των ζώων. Επίσης, περιείχαν αρκετά πτητικά συστατικά, που προσέδιδαν ιδιαίτερο άρωμα, κυρίως φρούτων. Η παραγόμενες SCP στη συνέχεια υπέστησαν αυτόλυση και λυοφιλίωση και αξιολογήθηκαν ως εκχύλισμα μικροβιολογίας για την ανάπτυξη βιομάζας S. cerevisiae AXAZ-1 σε συνθετικό θρεπτικό γλυκόζης. Επίσης, για σύγκριση χρησιμοποιήθηκε εμπορικό yeast extract. Τα εκχυλίσματα και το εμπορικό yeast extract χρησιμοποιήθηκαν σε τρείς συγκεντρώσεις (0,3%, 0,4% και 0,5% w/v) και η βιομάζα που παράχθηκε μετά από 48 h ζύμωσης προσδιορίστηκε με προσδιορισμό της οπτικής πυκνότητας με τη βοήθεια πρότυπης καμπύλης απορρόφησης αλλά και σταθμικά μετά από φυγοκέντριση. Τα εκχυλίσματα SCP από υγρές ζυμώσεις αποδείχτηκαν καλύτερα από το εμπορικό yeast extract δίνοντας μεγαλύτερη παραγωγικότητα βιομάζας σε όλες τις συγκεντρώσεις που μελετήθηκαν. Όσον αφορά τα εκχυλίσματα SCP από στερεές ζυμώσεις μόνο αυτό του K. marxianus ήταν καλύτερο σε όλες τις συγκεντρώσεις από το εμπορικό. Αντίθετα, το εκχύλισμα κεφίρ SSF ήταν χειρότερο από το εμπορικό σε όλες τις συγκεντρώσεις που μελετήθηκε.Τέλος, μελετήθηκε η περιεκτικότητα της SCP σε RNA, έτσι ώστε τα εκχυλίσματα SCP να χρησιμοποιηθούν στη συνέχεια ως ενισχυτικό γεύσης σε σούπες καρότου σε σύγκριση με αλάτι και γλουταμινικό μονονάτριο. Η περιεκτικότητα σε RNA ήταν πολύ υψηλή (264-1400 mg/100 g ξηρής SCP) με τις υψηλότερες τιμές να προσδιορίζονται στις SCP από στερεή ζύμωση. Στη συνέχεια τα εκχυλίσματα προστέθηκαν σε σούπα καρότου σε συγκέντρωση 0,5% w/w και σε ίδια ποσότητα προστέθηκαν σε δύο ακόμη σούπες αλάτι και γλουταμινικό νάτριο, αντίστοιχα. Οι σούπες δόθηκαν σε έξι κριτές για αξιολόγηση οι οποίοι βαθμολόγησαν τις σούπες με βάση μια κλίμακα προτίμησης 1-10 (10= Άριστη, 8= Πολύ καλή, 7= Καλή, 6= Μέτρια, 5= Αδιάφορη, 3= Κακή και 1= Πολύ κακή). Οι κριτές βαθμολόγησαν υψηλότερα τις σούπες που περιείχαν γλουταμινικό νάτριο, εκχύλισμα K. marxianus από στερεή ζύμωση και αλάτι ενώ όλες οι άλλες σούπες βαθμολογήθηκαν πιο χαμηλά. Ακολούθως, πραγματοποιήθηκε ανάλυση των αρωματικών ενώσεων με GC/MS όπου διαπιστώθηκε πως οι σούπες που περιείχαν εκχυλίσματα SCP ως ενισχυτικό γεύσης περιείχαν μεγαλύτερη συγκέντρωση πτητικών ενώσεων από αυτή με γλουταμινικό. Έτσι, φαίνεται πως το γλουταμινικό νάτριο μπορεί να αντικατασταθεί επιτυχώς από τα εκχυλίσματα μονοκυτταρικής πρωτεΐνης και έτσι να εξαλειφθούν τα «συμπτώματα του Kινέζικου εστιατορίου» για τα οποία έχει κατηγορηθεί


2018 ◽  
Vol 44 ◽  
pp. S115
Author(s):  
P. Comas Sanchez ◽  
I. Martinez Monge ◽  
M. Lecina ◽  
A. Casablancas ◽  
J.J. Cairó Badillo

2008 ◽  
Vol 74 (6) ◽  
pp. 1748-1756 ◽  
Author(s):  
Pedro M. R. Guimarães ◽  
Jean François ◽  
Jean Luc Parrou ◽  
José A. Teixeira ◽  
Lucília Domingues

ABSTRACT The construction of Saccharomyces cerevisiae strains that ferment lactose has biotechnological interest, particularly for cheese whey fermentation. A flocculent lactose-consuming S. cerevisiae recombinant expressing the LAC12 (lactose permease) and LAC4 (β-galactosidase) genes of Kluyveromyces lactis was constructed previously but showed poor efficiency in lactose fermentation. This strain was therefore subjected to an evolutionary engineering process (serial transfer and dilution in lactose medium), which yielded an evolved recombinant strain that consumed lactose twofold faster, producing 30% more ethanol than the original recombinant. We identified two molecular events that targeted the LAC construct in the evolved strain: a 1,593-bp deletion in the intergenic region (promoter) between LAC4 and LAC12 and a decrease of the plasmid copy number by about 10-fold compared to that in the original recombinant. The results suggest that the intact promoter was unable to mediate the induction of the transcription of LAC4 and LAC12 by lactose in the original recombinant and that the deletion established the transcriptional induction of both genes in the evolved strain. We propose that the tuning of the expression of the heterologous LAC genes in the evolved recombinant was accomplished by the interplay between the decreased copy number of both genes and the different levels of transcriptional induction for LAC4 and LAC12 resulting from the changed promoter structure. Nevertheless, our results do not exclude other possible mutations that may have contributed to the improved lactose fermentation phenotype. This study illustrates the usefulness of simple evolutionary engineering approaches in strain improvement. The evolved strain efficiently fermented threefold-concentrated cheese whey, providing an attractive alternative for the fermentation of lactose-based media.


Sign in / Sign up

Export Citation Format

Share Document